Protocolo para la Identificación de Artrópodos (Resolución Media)

Objetivo Primario:

Procesar todas las muestras para realizar un conjunto de datos con resolución media.

Objetivo Secundario:

Identificar hemípteros plagas, incluyendo taxones como Cicadellidae, Membracidae, Aphidoidea y Coccomorpha (por ejemplo, Pseudococcidae).

Buenas Prácticas y Directrices de Seguridad

Supervisión de Muestras: Mantener siempre las muestras a la vista. Terminar de procesar la muestra actual antes de pausar o cambiar de tarea para evitar confusiones o contaminaciones.
Descansos: Tomar descansos cortos regularmente para mantener la concentración y reducir el riesgo de errores.
Cuidado de los Ojos: Descansar los ojos cerrándolos brevemente de vez en cuando. Usar gotas para aliviar la tensión si hay molestias.
Movimiento Físico: Para evitar rigidez y mantener una buena circulación, levantarse y moverse al menos cada 30 minutos.
Aire Fresco: Es vital salir a respirar aire fresco cada dos horas, especialmente en áreas de recolección que contienen insecticidas para la preservación de especímenes.

Protocolo Detallado del Laboratorio

Inicio con las Muestras:
- Comenzar con las muestras más fáciles y avanzar hacia las más difíciles.
- Si encuentras una muestra (tubo falcon) sin etiqueta del mes, apártala y déjala en la oficina 317. Pedir las llaves al guardia o a Wendy.
Preparación de la Muestra:
- Vaciar cuidadosamente la muestra en una placa de Petri.
- Usar alcohol con moderación para la limpieza, no hacer albercas en la caja de Petri.
- Emplear una pipeta de plástico para enjuagar residuos.
Clasificación y aislamiento de Especímenes:
- Utilizar pinzas flexibles y/o un pincel fino y/o pipeta de plástico para separar diferentes morfotipos (pipeta y pincel para ácaros y colémbolos).
- Mantener el tubo Falcon original con su etiqueta cerca de la muestra para evitar confusiones y/o desasociar muestra y información.
- Agregar una pequeña cantidad de alcohol a 70% a cada pozo antes de transferir los organismos. No pasarse de lanza con el alcohol.
- Colocar cada tipo de organismo en un pozo separado de una placa de 12 pozos. En caso de encontrar pedazos de algún organismo y puedes identificarlos, trata de reconstruirlos y ponerlos en el mismo pozo.
- Limitar a 15-20 minutos el tiempo dedicado a separar organismos de cada muestra de aspirador y 25-40 a las muestras de pitfall.
Almacenamiento de Especímenes:
- Transferir los especímenes clasificados a contenedores apropiados con etanol al 70%.
- No forzar poner un bicho donde no cabe.
- Eppendorf de 0.6 para bichos muy chiquitos, eppendorf de 1.5 para bichos medianos y los tubos de vidrio para muestras que no quepan en los eppendorf.
Manejo de Especímenes Restantes:
- Si la placa de Petri ya no tiene bichos, hacer un último barrido visual de la muestra con aumento alto (por si se quedan ácaros o taxones pequeños) y después desechar cualquier residuo de planta o mineral.
- Si la placa de Petri sigue con bichos: transferir la muestra en un frasco de escintilación y etiquetarlo adecuadamente.
  - utilizar un embudo de vidrio transparente y LIMPIAR el embudo despues de usarlo para no hacer contaminacion cruzada entre muestras.
Etiquetado y Documentación:
- Cada contenedor debe tener un número de identificación único.
- Registrar detalles como nombre, fecha, información de la muestra y observaciones.
- Escribir con letra legible en las hojas de registro.

Instrucciones Adicionales

Gestión de Contenedores: Si se acaban los contenedores nuevos, reutilizar el tubo de la muestra etiquetándolo como "procesado + fecha".
Siempre etiquetar el contenedor y no la tapa. Se pueden etiquetar los dos pero nunca la tapa solamente.
Manejo de Muestras Sobrecargadas: En casos de muestras abrumadoras, priorizar el aislamiento de especies más raras.
Si hay muchos organismos repetidos (chingos de hormigas o isópodos) poner más atención a los otros que puedan salir en la muestra.
Dejar el exceso de organismos repetidos en un frasco de escintilación.
No pases más de 25-40 minutos en este tipo de muestra.